蛋白質消化為什麼有顏色變化

㈠ 蛋白消化後是綠色不是藍色

我覺得是你的硫酸銅被濃硫酸脫水了
水合硫酸銅用濃硫酸乾燥一下就變白了
但硫酸在高溫下的時候乾燥效果不好 水跟銅離子結合就藍了
你拿下來 溫度降下來 水被硫酸吸走 就白了
要試我說的對不對 往裡面加些水 重新變成藍色 就對了
應該不會對你的測定造成任何影響

㈡ 試述蛋白質測定中，樣品消化過程中內容物顏色發生什麼變化為什麼

蛋白質測定是生物化學和分子生物學研究中最常用、最基本的分析方法之一。人體正常值一般是 60～80 g/L。消化前加硫酸是應將附著在瓶壁上的粉末仔細沖洗至瓶中，消化 過程中應注意轉動燒瓶，利用冷凝的酸液將附著在瓶壁上的炭粒沖下，以促迚消化；

消化必須在通風櫥中迚行，消化開始時文火加熱，以克液體竄出。消化時如果採用 直接火加熱，火焰丌能超過液面以上，否則可能引起燒瓶爆裂；

樣品消化液丌易 澄清透明時，可將燒瓶完全冷卻後加入30%過氧化氫2~3mol 後繼續消化，直至消化 液澄清透明呈藍綠色為止。

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准備4個50mL凱氏燒瓶並標號，想1、2號燒瓶中加入定量的蛋白質樣品，另外兩個燒瓶作為對照，在每個燒瓶中加入硫酸鉀-硫酸銅混合物。

再加入濃硫酸，將4個燒瓶放到消化架上進行消化，之後進行蒸餾，全部蒸餾完畢後用標准鹽酸滴定各燒瓶中收集的氨量，直至指示劑混合液由綠色變回淡紫紅色，即為滴定終點，結算出蛋白質含量。

雙縮脲法是第一個用比色法測定蛋白質濃度的方法，硫銨不幹擾顯色， Cu2+與蛋白質的肽鍵，以及酪氨酸殘基絡合，形成紫藍色絡合物，此物在540nm波長處有最大吸收。首先利用標准蛋白溶液和雙縮脲試劑繪制標准曲線。

將待測血清與硫酸鈉在待測試管中混合，並用只加入硫酸鈉不含血清的試管作為對照，將兩支試管加入等量的雙縮脲試劑。

充分混合後於37℃環境中放置10分鍾，在540nm波長進行比色，以對照管調零，讀取吸光度值，由標准曲線上直接查出蛋白質含量。雙縮脲法常用於0.5g/L～10g/L含量的蛋白質溶液測定。