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压脉带压迫时间为什么不能过长

发布时间: 2023-02-15 13:41:00

‘壹’ 静脉采血的步骤

血样本的正确采集是获得准确、可靠实验结果的关键。在样本采集前,应根据实验要求,决定采血方法、所需血量及适用抗凝剂。实验中,凡需血量较多(>0.2ml)的检测,检验如多项血细胞分析、红细胞比积测定 、血流变学、生化检验等,可用静脉采血法取得标本;个别特殊检验,如血气分析需采集动脉血。 采血部位: 静脉采血多采用位于体表的浅静脉,通常采用肘部静脉、手背静脉、内踝静脉或股静脉。小儿可采颈外静脉血液。根据采血量可选用不同型号注射器,配备相应的针头。某些特殊检查,为避免血小板激活,要使用塑料注射器和硅化处理后的试管或塑料试管。 操作步骤: (1)患者准备:采血前应向患者耐心解释,以消除疑虑和恐惧心理。如个别患者进针时或采血后发生眩晕,应让其平卧休息。必要时可嗅吸芳香氨酊、针刺(或指压)入中和合谷等穴位。若因低血糖诱发眩晕,可立即静脉注射葡萄糖或让患者口服糖水。如有其他情况,应找医生共同处理。 (2)检查注射器:静脉采血前要仔细检查针头是否安装牢固,针筒内是否有空气和水分。所用针头应锐利、光滑、通气,针筒不漏气。 (3)消毒:先用30g/L碘酊棉签自所选静脉穿刺处从内向外、顺时针方向消毒皮肤,待碘酊挥发后,再用75%乙醇棉签以同样方法拭去碘迹。 (4)穿刺:以左手拇指固定静脉穿刺部位下端,右手拇指和中指持注射器针筒,食指固定针头下座,使针头斜面和针筒刻度向上,沿静脉走向使针头与皮肤成30.角斜行快速刺人皮肤,然后以5.角向前穿破静脉壁进人静脉腔。见回血后,将针头顺势探人少许,以免采血时针头滑出;但不可用力深刺,以免造成血肿,同时立即去掉压脉带。 (5)放血与混匀:取下注射器针头,将血液沿试管壁缓缓注入抗凝管中,防止溶血和泡沫产生。待血液自行凝固收缩后即可分离出淡黄色透明的血清。如需要全血或血浆,则将血液注入事先准备好的抗凝管(瓶)中,轻轻混匀,防止凝固,即为抗凝全血。 (6)采血完毕,应再次核对病人姓名和号码,应将用过的器材放在固定的回收箱内,决不能随意丢弃,污染环境。 注意事项: (1)为了避免淤血和浓缩,压脉带压迫时间不可过长,最好不超过半分钟; (2)抽血时,针栓只能外抽,不能内推。以免静脉内注入空气形成气栓,造成严重后果; (3)当肢体正在进行静脉输液时,不宜由同一静脉采集标本; (4)标本不能及时检测或需保留以复查时,一般应存放于4~6℃冰箱。

‘贰’ 全血比黏度简介

目录

  • 1 拼音
  • 2 英文参考
  • 3 概述
  • 4 全血比黏度的别名
  • 5 全血比黏度的医学检查
    • 5.1 检查名称
    • 5.2 分类
    • 5.3 取材
    • 5.4 全血比黏度的测定原理
    • 5.5 试剂
    • 5.6 操作方法
    • 5.7 正常值
    • 5.8 化验结果临床意义
    • 5.9 附注
    • 5.10 相关疾病

1 拼音

quán xuè bǐ nián dù

2 英文参考

whole blood specific viscosity

3 概述

全血比黏度不仅检测血液本身(主要是红细胞)的变化,亦可了解血管和心脏的变化。

全血比黏度分为高切变和低切变两种黏度。高发变黏度反映红细胞的变形能力,红细胞变形能力低的血液,其高切变黏度便高;低切变黏度反映红细胞的聚集能力,红细胞相互聚集的血液,其低切变黏度增高。

4 全血比黏度的别名

全血比粘度

5 全血比黏度的医学检查

5.1 检查名称

全血比黏度

5.2 分类

临床血液流变学检查

5.3 取材

血液

5.4 全血比黏度的测定原理

(1)原理部分:

旋转式黏度计法:常见的旋转式黏度计是同轴锥板式结构,平板部分为样品杯,它与调速马达相连,当平板以某一转速旋转时,转动的扭矩通过血样传递到锥体;血样越粘,传入的扭矩越大(图1)。锥体受力大小由与其相连的测力传感器检测,利用下式可计算被测液体的黏度η:

式中,N为转数(r/min),M为扭矩,K为仪器常数。它是由两个同轴部件的几何参数、角速度及应力检测装置的一些物理参数决定的,一般在仪器出厂时均已标出,用户也可根据黏度计说明书,自己标定K值。目前国内外常见的测量稳流状态下血液黏度计有日本E型黏度计,国产NXEⅠ型、NZ6型黏度计等,它们仅能作血液表观黏度测量。另一类较复杂的流变仪,它们不仅可以测量稳流状态下的血液黏度,而且可作振荡流动状态下血液黏弹性的测量,但价格昂贵。

(2)结构部分:

①黏度及有关物理量的单位:根据国际单位制(SI)的规定,黏度应以mPa·s(毫帕·秒)为单位。过去常以泊或厘泊为单位,1mPa·s=1cp,黏度与其他物理量之间的关系归纳下表(表1)。

②测试条件:

A.切变率:不同的黏度计有不同的量程。根据国际血液学标准化委员会(ICSH)的建议,测定血液黏度理想的切变率范围选择在1~200s-1。临床血液黏度测量可在此范围内选择两个以上切变率,其中一个应选择在40s-1以下,最好选择在10s-1以下,高切变率最好选在200s-1左右。

B.测试温度:液体黏度与温度成负相关,血液黏度计应该有较好的恒温控制系统,温度波动范围应小于0.5℃,测试温度选择在25℃或37℃均可。

5.5 试剂

抗凝剂的使用对于血液粘度测定亦有影响。目前认为,以肝素或EDTA(乙二胺四乙酸盐)为宜,其抗凝浓度应分别在10~20U/ml血及3.4~4.8mol/L血的范围。值得注意的是EDTA三钾盐与EDTA二钾盐相比,会造成平均细胞容积的降低。肝素有可能造成血小板的微聚集体,会影响细胞滤过能力。所以,对于某些粘度测定与细胞滤过实验共存的检验不太适合。枸橼酸盐或草酸盐作为抗凝剂容易引起细胞皱缩,一般不作为粘度测定时的抗凝剂。只在某些条件加以控制,或与血小板聚集实验共用血样时使用。

5.6 操作方法

(1)打开仪器预热,使恒温系统达到测试温度。

(2)将试样在测试温度下恒温5min后,充分混匀加入试样杯。

(3)按测量键,切变率按由高至低的顺序进行测量。为了避免血球下沉,选择切变率档次不宜过多,每档停留时间不宜太长。

(4)每个试样测量后应将试样杯清洗擦干。

5.7 正常值

锥板式血液黏度计检验法

高切:男:2.70~5.20mPa·s

女:1.64~4.78mPa·s

中切:男:5.03~6.67mPa·s

女:4.36~5.88mPa·s

低切:男:8.23~10.01mPa·s

女:7.67~10.29mPa·s

5.8 化验结果临床意义

(1)增高:缺血性脑卒中、心肌梗死、冠状动脉粥样硬化性心脏病(冠心病)、肺心病、血栓性闭塞性脉管炎、动脉硬化性栓塞、肿瘤、多发性骨髓瘤、原发性巨球蛋白血症、纤维蛋白原增多症、真性红细胞增多症。

(2)降低:出血性脑卒中、呕血与黑粪(上消化道出血)、子宫出血、出血性休克。

5.9 附注

(1)采血与抗凝:采血方式不当可引起黏度测量误差。根据ICSH的建议,压脉带压迫的时间应尽可能缩短,针头插入后,应在压脉带松开5s后开始采血,抽血时用力不宜过猛。

抗凝剂应采用固体抗凝剂,以防止对血液的稀释作用,若采用液体抗凝,应提高抗凝剂的浓度,以减少加入液体量,一般以肝素或乙二胺四乙酸二钾或二钠(EDTAK:或EDTANa2)抗凝,但因钾盐溶解度大,故以钾盐为好。

(2)试样存放时间:采血后应立即进行测试,在室温下存放过长时会引起测量结果偏高,最好于4h内完成测试。若存于4℃冰箱可延长至12h,血标本不宜在0℃以下存放,因为在冰冻条件下红细胞会发生破裂。

(3)生命节律的影响:曾有研究指出,人体在1天中血液黏度呈现规律性的变化,有两次高峰,分别在上午11时和下午8时。进食会引起血细胞比容和血浆成分的变化,因此采血时间以清晨空腹为宜。

(4)参考值问题:血液黏度是血浆黏黏度、血细胞比容、红细胞的聚集和变形,血小板及白细胞等这些内在因素在一定测量条件下的宏观表现,而这些因素又在一定范围内波动,因此血液黏度也有一定波动范围。在病理状态下血液流变性会发生复杂变化。因此要评价血液黏度是否正常必须要有参考值,参考值必须由经过严格检查、健康状况良好的人群获得。但人群中疾病的检出率依赖于人的年龄、医学知识和检测技术的水平,因此参考值具有相对性。另外不同地区的人群生活水平和习惯不同,对血液黏度也有影响,因此没有普遍适用的参考值,即使采用通用的仪器和标准化的操作方法也是如此。因此不同地区和实验室应具有自己的参考值。

(5)血细胞比容对黏度的影响:血液是血细胞在血浆中的悬浮液,其黏度受血浆和血细胞性质的影响,为排除血浆黏黏度对血液黏度的影响,引入了相对黏度(ηr)的概念,它是血液黏度(ηb)与血浆黏黏度(ηp)的比值,即:

红细胞是血液中最主要的有形成分,对血液黏度的影响最大,全血黏度随血细胞比容的增加呈指数上升,为排除血细胞比容(HCT)变化对血液黏度的影响,引入了还原黏度的概念,它表示红细胞单位压积变化引起的血液黏度的增加,即:

由于在低切变率下血液黏度主要受红细胞聚集的影响,高切变率时,血液黏度主要受红细胞变形性的影响。因此,若低切变率下,还原黏度升高,表明红细胞聚集性升高,若高切变率时,还原黏度升高,表明红细胞变形性降低。

5.10 相关疾病

‘叁’ 采集静脉血标本操作中的注意事项有那些

注意事项:采血前应向患者耐心解释,以消除不必要的疑虑和恐惧心理。如遇个别患者进针时或采血后发生眩晕,应立即拔出针头让其平卧休息片刻,即可恢复。必要时可给患者嗅芳香氨酊、针刺(或拇指压掐)人中和合谷等穴位。若因低血糖诱发眩晕,可立即静脉注射葡萄糖或嘱患者口服糖水即可,如有其他情况,应立即找医生共同处理;应防止血标本溶血。造成溶血的原因有注射器和容器不干燥、不清洁;压脉带捆扎时间太长,瘀血过久;穿刺不顺损伤组织过多;溶血后的标本,不仅红细胞计数和红细胞比积降低,还使血清(浆)化学成分发生变化,因此必须避免,为了避免瘀血和浓缩,压脉带压迫时间不可过长,最好不超过30秒:抽血时,只能向外拉,不能向静脉内推,以免空气注入成气栓,造成严重后果。

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